FAQ
Szukaj
Użytkownicy
Grupy
Galerie
Rejestracja
Profil
Zaloguj
Forum 2006/2007 wydział lekarski Strona Główna
->
Mikrobiologia
Napisz odpowiedź
Użytkownik
Temat
Treść wiadomości
Emotikony
Więcej Ikon
Kolor:
Domyślny
Ciemnoczerwony
Czerwony
Pomarańćzowy
Brązowy
Żółty
Zielony
Oliwkowy
Błękitny
Niebieski
Ciemnoniebieski
Purpurowy
Fioletowy
Biały
Czarny
Rozmiar:
Minimalny
Mały
Normalny
Duży
Ogromny
Zamknij Tagi
Opcje
HTML:
NIE
BBCode
:
TAK
Uśmieszki:
TAK
Wyłącz BBCode w tym poście
Wyłącz Uśmieszki w tym poście
Kod potwierdzający: *
Wszystkie czasy w strefie EET (Europa)
Skocz do:
Wybierz forum
Organizacyjne
----------------
Forum jest nieczynne.
III rok
----------------
Ogłoszenia
Patomorfologia
Patofizjologia
Higiena
Mikrobiologia
Immunologia
Farmakologia
Interna
Pediatria
II rok
----------------
Ogłoszenia
Biochemia
Fizjologia
Histologia
Grupa C
Połowinki
I rok
----------------
Anatomia
Biofiza
QLTURA
----------------
Tematy wszystkie
KOSZ
----------------
Kosz
Przegląd tematu
Autor
Wiadomość
Magda La...
Wysłany: Nie 12:36, 19 Paź 2008
Temat postu:
barwienia i budowa kom bakteryjnej ciagle, tyle tylko, ze mamy sie skupic na elementach dodtakowych np przetrwalniki otoczka rzeski fimbrie itp
Marta
Wysłany: Nie 11:21, 19 Paź 2008
Temat postu:
Kochani, a powiedzcie mi jeszcze czego trzeba się nauczyć na 3 ćwiczenie. Rozpiska rozpiską, a ja i tak nie wiem. Może mówili Wam coś asystenci?
Marta
Wysłany: Sob 17:55, 18 Paź 2008
Temat postu:
aa to nie wiedziałam, dzięki za informacje:))
Magda La...
Wysłany: Sob 17:18, 18 Paź 2008
Temat postu:
u nas tak samo mówiła
KaMiLciA :)
Wysłany: Sob 13:59, 18 Paź 2008
Temat postu:
ale u nas babka powiedziala, ze bedzie przynajmniej jedno pytanie z barwienia na wejsciowce.
Marta
Wysłany: Sob 13:27, 18 Paź 2008
Temat postu:
to jest potrzebne na trzecie cwiczenie? a nie bylo tego na cw drugim?
KaMiLciA :)
Wysłany: Pią 16:40, 17 Paź 2008
Temat postu:
ooo wlasnie
nie chwal sie, ze umiesz
ja tez sie naucze!
wojtek
Wysłany: Pią 16:23, 17 Paź 2008
Temat postu:
np tak?
KaMiLciA :)
Wysłany: Pią 15:31, 17 Paź 2008
Temat postu:
prosciej byloby wstawic zdjecia, tak jak to robi wiekszosc z was
ale:
1.nie zglebilam jeszcze tajnikow wiedzy dotyczacej umieszczania zdjec tam,gdzie wiekszosc z was je umieszcza
2. ta forma jest latwiejsza do drukowania (jakby ktos mial ochote cos takiego zrobic)
KaMiLciA :)
Wysłany: Pią 15:25, 17 Paź 2008
Temat postu: Barwienie przetrwalników.
moze komus sie przyda. material potrzebny na wejsciowke na nastepne (trzecie) cwiczenie.
BARWIENIE PRZETRWALNIKÓW
METODA DORNERA
1. Do zawiesiny bakteryjnej w małej próbce dodajemy taką samą objętość stężonej fuksyny karbolowej.
2. Wstawiamy do łaźni wodnej i gotujemy 20 min.
3. Po tym czasie probówkę wyjmujemy, wstrząsamy i za pomocą ezy nanosimy 1-3 krople mieszaniny na szkiełko podstawowe.
4. Do tego dodajemy 1-3krople nigrozyny, rozprowadzamy na powierzchni szkiełka, suszymy w temp.pokojowej, oglądamy pod immersją.
WYNIKI:
- przetrwalniki – czerwone
- komórki – bezbarwne
- tło – czarne
METODA SHAEFFERA – FULTONA
1. wykonać zawiesinę drobnoustrojów na szkiełku.
2. Utrwalić w płomieniu palnika.
3. Nanieść na szkiełko zieleń malachitową lub brylantową; podgrzewać nad parą przez 5min.
4. Spłukać dokładnie wodą.
5. Nanieść fuksynę zasadową na ok.30seq.
6. Spłukać wodą.
7. Oglądać pod immersją.
WYNIKI:
- przetrwalniki – zielone
- komórki wegetatywne – czerwone
METODA GRAMA
1. Przygotowanie szkiełek:
a) mycie
b) odtłuszczanie (opalanie nad płomieniem palnika)
2. Nakładanie materiału
a) wykonanie ezą zawiesiny na szkiełku podstawowym w kropli soli fizjologicznej
b) wysuszenie preparatu w temp.pokojowej
c) utrwalenie preparatu nad płomieniem palnika
3. Barwienie
a) Fiolet krystaliczny 2minuty, spłukać wodą
b) Płyn Jugola 1minuta, spłukać wodą
c) Alkohol 20seq, spłukać wodą
d) Fuksyna 15 seq, spłukać wodą
4. Osuszyć preparat bibułką i oglądać pod immersją.
WYNIKI:
- Gram (+) – niebieski
- Gram (-) – czerwony
METODA ZIEHL – NEELSENA
1. Na utrwalony rozmaz bakterii na odtłuszczonym szkiełku podstawowym nanosimy barwnik podstawowy (stężona fuksyna) na 15min. W trakcie barwienia podgrzewamy preparat palnikiem (do tzw. „trzech par”).
2. Zlewamy barwnik i spłukujemy wodą destylowaną.
3. Odbarwiamy preparat w 3%roztworze HCl w etanolu (alkohol kwaśny).
4. Spłukujemy wodą destylowaną.
5. Nanosimy barwnik kontrastowy, np. błękit metylenowy na 10min.
6. Spłukujemy wodą destylowaną.
7. Suszymy preparat na pasku bibuły i przeprowadzamy obserwacje w mikroskopie świetlnym z zastosowaniem immersji.
WYNIK:
- bakterie kwasooporne – czerwony (pochodzący z fuksyny; nie odbarwiają się one w alkoholu kwaśnym)
- bakterie niekwasooporne – niebieski (od błękitu metylenowego; odbarwiają się w alkoholu kwaśnym – fuksyna zostaje „wypłukana”)
METODA MANEVALA ( barwienie pozytywno-negatywne w celu uwidocznienia otoczek bakteryjnych)
1. Przygotowanie szkiełek podstawnych (umyć, osuszyć, odtłuścić, ostudzić)
2. Nanieść kroplę (oczko ezy) czerwieni KONGO na szkiełko podstawowe.
3. Zrobić zawiesinę z hodowli bakteryjnych w kropli czerwieni KONGO i równomiernie rozprowadzić na powierzchni szkiełka.
4. Pozostawić preparat do wyschnięcia. Nie utrwalać nad płomieniem palnika.
5. Następnie nakropić na szkiełko odczynnik Manevala na 1min
6. Zlać odczynnik.
7. Preparat pozostawić na samoistnego wyschnięcia. Oglądać pod immersją.
WYNIK:
- komórki – czerwone
- tło – niebieskie
- otoczki – bezbarwne
BARWIENIE PROSTE BŁĘKITEM METYLENOWYM (barwienie pozytywne)
1. Bakterie nanieść na szkiełko podstawowe.
2. Po wyschnięciu, preparat utrwalić poprzez przeciągnięcie szkiełka nad płomieniem palnika 3 razy. NIE TRZYMAĆ SZKIEŁKA W PŁOMIENIU.
3. Nanieść roztwór błękitu metylenowego i pozostawić na 5 minut.
4. Delikatnie spłukać wodą, pozostawić do wyschnięcia (można osuszyć bibułą).
5. Oglądać pod immersją.
BARWIENIE PROSTE NIGROZYNĄ (barwienie negatywne)
1. Wykonać ezą zawiesinę w kropli soli fizjologicznej na szkiełku podstawowym.
2. Do kropli zawiesiny dodać kroplę barwnika – nigrozyny (tusz chiński).
3. Dokladnie rozprowadzić na powierzchni szkiełka.
4. Pozostawić preparat do wyschnięcia (w temp.pokojowej).
5. Oglądać pod immersją.
METODA NEISSERA
Barwnik Neissera I: błękit metylenowy 0,1g
Alkohol etylowy - 0,2ml
Woda destylowana – 100ml
Barwnik Neissera II: fiolet krystaliczny – 1g
Alkohol etylowy – 10ml
Woda destylowana – 300ml
Roztwór chryzoidyny: chryzoidyna – 1g
Woda destylowana (wrząca) – 300ml
(przesączyć przez sączek bibułowy)
1. Wykonać zawiesinę drobnoustrojów na szkiełku.
2. Utrwalic w płomieniu palnika.
3. Zmieszać barwnik Neissera I i II w stosunku 2:1
4. Barwienie:
barwienie Neissera I +II = 10min
spłukać wodą
chryzoidyna – 10 seq
bez spłukiwania wodą wysuszyć preparat w bibule.
5. Oglądać pod immersją.
WYNIK:
- ziarna wolutyny – ciemnogranatowe
- komórka – żółto-brązowa
OGLĄDANIE PREPARATÓW POD IMMERSJĄ
1. Ustawić preparat na stoliku mikroskopu.
2. Nałożyć na preparat kroplę olejku immersyjnego.
3. Ustawić na rewolwerze 100x „I”
4. Makrośrubą (ostrożnie pod kontrolą wzroku) opuścić obiektyw do powierzchni preparatu (do zanurzenia w olejku immersyjnym).
5. Patrząc w okular wolno podnosić obiektyw do góry aż do uzyskania obrazu.
6. Ostrość obrazu regulować mikrośrubą.
7. Po obejrzeniu preparatu wyjąć szkiełko oraz wytrzeć z olejku stolik i obiektyw.
fora.pl
- załóż własne forum dyskusyjne za darmo
Powered by
phpBB
© 2001, 2005 phpBB Group
Saphic 1.5 // Theme created by
Sopel &
Programosy.pl
Regulamin